Thermo Fisher Scientific Primagam Non‑Human Primate M. tuberculosis Interferon‑Gamma Kit Instruções de operação

Tipo
Instruções de operação
Primagam NonHuman Primate M. tuberculosis
InterferonGamma Kit
ELISA para detecção de tuberculose em primatas não humanos
Referência de catálogo 63311
N.º de pub. MAN0018721 Rev. A.0
Tecnologia Espécie Tipo de amostra
ELISA Primatas não humanos Sangue total
ATENÇÃO! Leia as Fichas de Informações de Segurança de Produtos Químicos (FISPQ) e siga as instruções de manuseio. Use
roupas, óculos e luvas de proteção adequados. Ficha de Informações de Segurança de Produto Químico (FISPQ) estão disponíveis
em thermosher.com/support.
Descrição do produto
O Applied Biosystems Primagam Non-Human Primate M. tuberculosis Interferon-Gamma Kit é um teste de diagnóstico baseado em
ELISA que mede o interferon-γ (IFN-γ) nas amostras de sangue total para detectar tuberculose (TB). A liberação de IFN-γ em resposta ao
estímulo com os antígenos derivados da proteína puricada (PPD) de tuberculina é um biomarcador altamente preditivo da infecção de
TB. O kit detecta o IFN-γ nas seguintes espécies: Aotus (macaco-da-noite), Ateles (macaco-aranha), Colobus (Colobus guereza),
gibão/siamang, Cercopithecus/macaco-do-pântano, Semnopithecus, lêmur, Macaca ssp, mandril, zaris, macaco-esquilo, sagui e macaco-
vervet.
A tuberculose é uma doença progressiva que afeta o sistema respiratório dos primatas. Pode ser transmitida de um primata não humano
para seus cuidadores em zoológicos e laboratórios de pesquisa, o que representa um risco para a saúde pública. O teste de tuberculinização
intradérmico é o método tradicional que é usado para testar TB em primatas não humanos. Este teste requer imobilização e detecta TB com
base na inamação e inchaço no local da injeção. O teste Primagam Non-Human Primate M. tuberculosis Interferon-Gamma Kit pode ser
usado para a detecção de TB associado com ou como uma alternativa ao teste de tuberculinização intradérmico.
O kit segue um procedimento laboratorial de dois dias:
Dia 1 — As amostras de sangue total são coletadas em tubos de heparina e depois as alíquotas de cada amostra são incubadas com
um antígeno único: Bovine PPD, Avian PPD ou Nil Antigen Control.
Dia 2 — O IFN-γ, que é produzido pelos linfócitos estimulados pelo antígeno, é medido com o uso da técnica de ELISA.
O kit foi avaliado durante um surto de tuberculose em 54 macacos cinomolgos (Macaca fascicularis) e 22 rhesus (Macaca mulaa). Os
resultados do kit revelaram sensibilidade de 92% com especicidade de 100%. Uma avaliação extra em uma colônia separada,
presumivelmente sem TB com base no histórico, e um regime de testes cutâneos regulares, também resultaram em 100% de especicidade.
INSTRUÇÕES DE USO
Somente para uso veterinário. Somente para uso in vitro.
Conteúdo e armazenamento
São fornecidos reagentes e placas para 30 testes.
Nota: Para obter as instruções de reconstituição e de diluição, consulte “Antes de começar“ na página 3.
Tabela 1 Primagam NonHuman Primate M. tuberculosis InterferonGamma Kit (Ref. de cat. 63311)
Conteúdo Descrição Quantidade Armazenam
ento [1]
Microplate Strip[2] Pronto para uso. 2 microplacas com 96 poços
cada
2 °C a 8 °C
Bovine PPD Dilua antes do uso. 5 ml
Avian PPD Dilua antes do uso. 5 ml
Nil Antigen Control
Pronto para uso.
Contém 0,01% de timerosal peso
por volume (w/v).
5 ml
Positive Primate IFN-γ Control Reconstitua antes do uso.
Contém timerosal 0,01% (w/v).
1 frasco de sólidos
liofilizados
Negative Primate IFN-γ Control Reconstitua antes do uso.
Contém timerosal 0,01% (w/v).
1 frasco de sólidos
liofilizados
Green Diluent (Amostra e tampão do diluente conjugado) Pronto para uso.
Contém timerosal 0,01% (w/v). 40 ml
Conjugate100x Concentrate (Anticorpo IFNγ antiprimata
marcado com peridoxidase de rábano)
Reconstitua antes do uso.
Contém timerosal 0,01% (w/v).
1 frasco de sólidos
liofilizados
Wash Buffer20x Concentrate Dilua antes do uso.
Contém timerosal 0,01% (w/v). 2 × 50 ml
Enzyme Substrate Buffer Pronto para uso.
Contém H2O2.30 ml
Chromogen Solution100x Concentrate Dilua antes do uso.
Contém TMB em DMSO. 0,5 ml
Enzyme Stopping Solution Pronto para uso.
Contém H2 SO2 0,5 M. 15 ml
[1] Consulte a data de validade no rótulo.
[2] Os pos são revestidos com anticorpos contra IFNγ de primata.
Materiais necessários não fornecidos
A menos que haja orientações diferentes, todos os materiais estão disponíveis em thermosher.com.
Item Fonte[1]
Instrumentos
Multiskan FC Microplate Photometer, ou leitor de microplacas equivalente[2] 51119000
Wellwash Microplate Washer, ou equivalente 5165000
(Opcional)
Agitador de microplacas MLS
(Opcional)
Homogeneizador para tubos MLS
2
Instruções de uso Primagam
NonHuman Primate M. tuberculosis InterferonGamma Kit
Item Fonte[1]
Equipamentos
Cabine de biossegurança (BSC, nível II) MLS
Pipeta monocanal (10 a 1000 µl) MLS
Pipeta multicanal (50 a 500 µl) MLS
Misturador para laboratório (vórtex ou equivalente) MLS
Porta-agulhas, 2 a 3 por coletor MLS
Incubadora úmida ajustada para 37 °C MLS
Provetas (100 ml, 1 L e 2 L) MLS
Tubos, placas e outros suprimentos
Tubos com heparina de lítio para coleta de sangue, 1 tubo por animal MLS
Agulhas de 23G a 18G para Vacutainer de 1,5 pol., 1 agulha por animal MLS
Pipetas estéreis graduadas de 1 ml ou 5 ml MLS
Placa de cultura com 24 poços, 1 placa a cada 8 animais MLS
Microtubos de 1 ml no formato de 96 poços com estante e tampas, 1 estante a cada 30 animais MLS
Tubos de polipropileno MLS
Ponteiras de pipeta (conforme recomendado pelo fabricante da pipeta) thermofisher.com/pipettetips
Reservatórios de solução MLS
Reagentes
Água deionizada ou destilada (2 L) MLS
Meio RPMI ou PBS (1X), pH 7.4 MLS
[1] MLS: Fisher Scientific (fisherscientific.com) ou outro importante fornecedor de produtos para laboratório.
[2] O leitor de microplacas deve ter a capacidade de medição em 450 nm com um filtro de refencia entre 620-650 nm.
Diretrizes do procedimento
Seguir rigorosamente as Regulações Nacionais de Segurança.
Utilize o protocolo do kit em laboratórios adequados para o seu propósito.
Considere as amostras como possivelmente infecciosas e todos os itens que entrarem em contato com as amostras como possivelmente
contaminados.
Manuseie todas as amostras de sangue de primatas em uma cabine de biossegurança (BSC, nível II).
Realize o ensaio de todas as amostras e dos controles em duplicata.
Descarte os recipientes e reagentes não utilizados de acordo com as exigências locais de resíduos biomédicos.
Troque as ponteiras da pipeta após cada etapa de pipetagem.
Mantenha reservatórios separados de solução para cada reagente.
Não use os componentes do kit após a data de validade ou caso sejam observadas alterações na aparência.
Não use os componentes do kit que tenham diferentes números de lote de kit.
Use água destilada ou deionizada ou água de qualidade equivalente.
Use uma lavadora de microplacas para todas as etapas de lavagem.
Antes de começar
Determine a configuração máxima do agitador de placas
Se for usado um agitador de placas, determine a conguração máxima.
1. Verique se a placa se ajusta com segurança ao agitador.
2. Acrescente 1,6 ml de água em cada poço da placa, depois cubra com um lme de vedação.
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3
3. Determine a conguração máxima que seja possível usar no seu agitador sem que a água respingue no lme de vedação.
Dilua os antígenos
1. Acrescente 160 µl de Bovine PPD a 840 µl de meio RPMI ou PBS para obter a concentração nal de ensaio de 300 UI/ml.
2. Acrescente 160 µl de Avian PPD a 840 µl de meio RPMI ou PBS para obter a concentração nal de ensaio de 250 UI/ml.
Armazene os antígenos diluídos entre 2 °C e 8 °C por até um mês.
Reconstitua os controles
1. Reconstitua Positive Primate IFN-γ Control e Negative Primate IFN-γ Control em 1,0 ml de água deionizada ou destilada.
2. Deixe repousar por pelo menos 15 minutos, até o conteúdo se dissolver.
3. Inverta suavemente cada tubo de 4 a 5 vezes para misturar.
Armazene os controles reconstituídos entre 2 °C e 8 °C por até três meses.
Reconstitua o Conjugate100x Concentrate
IMPORTANTE! Mantenha o Conjugate-100x Concentrate sempre entre 2 °C e 8 °C, mesmo durante a reconstituição.
1. Reconstitua o Conjugate-100x Concentrate em 0,5 ml de água deionizada ou destilada.
2. Deixe repousar por pelo menos 15 minutos, até o conteúdo se dissolver.
3. Suavemente inverta o tubo de 4 a 5 vezes para misturar, depois mantenha entre 2 °C e 8 °C até o uso.
Armazene o Conjugate-100x Concentrate reconstituído entre 2 °C e 8 °C por até 3 meses.
Prepare o Wash Buffer1x
Nota: Uma microplaca de 96 poços requer 1 L de Wash Buer‑1x.
1. (Opcional) Se o Wash Buer‑20x Concentrate apresentar um precipitado, aqueça o frasco em banho-maria de 37 °C até que o
precipitado seja dissolvido.
2. Misture o Wash Buer‑20x Concentrate completamente.
3. Combine 1 parte de Wash Buer‑20x Concentrate com 19 partes de água deionizada ou destilada.
Por exemplo, acrescente 50 ml de Wash Buer‑20x Concentrate a 950 ml de água deionizada ou destilada.
4. Misture até obter uma solução homogênea.
Armazene o Wash Buer‑1x em temperatura ambiente (22 ± 3 °C) por até duas semanas ou entre 2 °C e 8 °C por até um mês.
Dia 1 — Colete as amostras de sangue total, depois incube com os antígenos
Colete as amostras de sangue total
1. Colete pelo menos 5 ml de sangue de cada animal nos tubos com heparina, depois transra as amostras para o laboratório à
temperatura ambiente.
2. Faça a cultura das amostras de sangue até 12 horas após a coleta para manter a viabilidade dos linfócitos (próxima seção).
Retire as alíquotas das amostras de sangue e depois incube com os antígenos
1. Misture cada amostra de sangue para garantir que a heparina se dissolva, de acordo com o seu método de mistura.
Use um agitador de tubo tipo roller — Homogeneíze suavemente por 1 a 2 minutos.
Por inversão — Inverta suavemente cada tubo 10 vezes.
2. Transra três alíquotas de 1,5 ml de cada amostra de sangue para poços separados de uma placa de cultura de 24 poços (consulte
Tabela 2).
4
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3. Acrescente 100 µl de Nil Antigen Control (N), Bovine PPD diluído (B) ou Avian PPD diluído (A) aos poços apropriados que
contenham sangue, de acordo com a tabela a seguir.
Tabela 2 Esquema recomendado de placa de amostra
123456
AAnimal 1
NAnimal 1
BAnimal 1
AAnimal 2
NAnimal 2
BAnimal 2
A
BAnimal 3
NAnimal 3
BAnimal 3
AAnimal 4
NAnimal 4
BAnimal 4
A
CAnimal 5
NAnimal 5
BAnimal 5
AAnimal 6
NAnimal 6
BAnimal 6
A
DAnimal 7
NAnimal 7
BAnimal 7
AAnimal 8
NAnimal 8
BAnimal 8
A
4. Usando um agitador de placas, misture completamente as amostras com os antígenos por 1 minuto (consulte “Determine a
conguração máxima do agitador de placas“ na página 3).
Alternativamente, se o agitador de placas não estiver disponível, agite a placa de cultura para misturar. Segure a placa e a tampa
juntas com rmeza, agite dez vezes no sentido horário e depois repita no sentido anti-horário.
IMPORTANTE! Para o desempenho ideal do ensaio, assegure-se de que as amostras estejam completamente misturadas com os
antígenos. Não é possível misturar demais.
5. Transra a placa de cultura para uma incubadora úmida ajustada para 37 °C e depois incube durante 16 a 20 horas.
Dia 2 — Colheita de plasma, depois realize o ELISA
Antes de começar
Equilibre todos os componentes do kit (exceto Conjugate-100x Concentrate) à temperatura ambiente, depois misture suavemente os
reagentes, as amostras e os controles.
Nota: Alguns reagentes podem necessitar de algumas horas para equilibrar a temperatura. Se for necessário um tempo menor de
equilíbrio, aqueça os reagentes em banho-maria a 30 °C.
Colete o plasma, depois armazene as amostras (opcional)
1. Remova da incubadora a placa de cultura.
2. (Opcional) Centrifugue a placa em 500 × g à temperatura ambiente por 5 minutos.
3. Evite a parte inferior de hemácias e pipete cuidadosamente para transferir de 150 a 300 µl de plasma para um microtubo de 1 ml
limpo em uma estante de armazenamento de 96 poços (consulte Tabela 3).
Nota: É importante evitar coletar as hemácias com o plasma durante essa etapa. Contudo, uma pequena quantidade de hemácias não
afetará o ensaio.
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Os seguintes esquemas de armazenamento permitem a transferência eciente de amostras da estante de armazenamento para as tiras
da microplaca, usando uma pipeta multicanal.
Tabela 3 Esquema recomendando de armazenamento de plasma
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
A 1N[1] 1B 1A 2N 2B 2A 3N 3B 3A 4N 4B 4A
B 5N 5B 5A 6N 6B 6A 7N 7B 7A 8N 8B 8A
C 9N 9B 9A X X X 10N 10B 10A 11N 11B 11A
D 12N 12B 12A 13N 13B 13A 14N 14B 14A 15N 15B 15A
E 16N 16B 16A 17N 17B 17A 18N 18B 18A 19N 19B 19A
F 20N 20B 20A 21N 21B 21A 22N 22B 22A 23N 23B 23A
G 24N 24B 24A X X X 25N 25B 25A 26N 26B 26A
H 27N 27B 27A 28N 28B 28A 29N 29B 29A 30N 30B 30A
[1] Cada po indica o número do animal seguido pelo antígeno (N—Nil Antigen Control, B—Bovine PPD, A—Avian PPD, X—vazio).
Nota: Após a transferência das amostras para as tiras da microplaca, use os poços vazios (X) para os controles que são fornecidos com
o kit.
4. (Opcional) Armazene as amostras de plasma em microtubos selados em 2 °C a 8 °C por até 28 dias ou em -20 °C por até 5 anos.
Assegure-se de que as estantes de amostras incluam a data, iniciais do operador, o conteúdo dos tubos e as informações do animal.
Realize o ELISA
Equilibre todos os componentes do kit (exceto Conjugate-100x Concentrate) à temperatura ambiente, depois misture suavemente os
reagentes, as amostras e os controles.
Determine o número de tiras de microplaca de 8 poços que são necessárias para o ensaio e, em seguida, coloque as tiras nas estruturas
da microplaca. Devolva qualquer tira e estrutura não usada para a bolsa, depois armazene de 2 °C a 8 °C para uso futuro.
= Anticorpo anti-IFN-γ  
= IFN-γ  
= Conjugado  
= Substrato
a. Acrescente 50 µl de Green Diluent em cada poço da microplaca montada.
b. Transra 50 µl de cada amostra de plasma para o poço apropriado contendo Green Diluent.
As amostras de plasma para cada animal devem ser acrescentadas aos poços ao mesmo tempo.
Recomendamos o uso de uma pipeta multicanal.
Nota: As amostras de plasma podem coagular quando descongeladas. Pipete cuidadosamente
para garantir que o volume correto de plasma seja acrescentado em cada poço.
c. Acrescente 50 µl de cada controle ao poço apropriado contendo Green Diluent.
d. Misture as amostras e os controles com Green Diluent usando um agitador de placas congurado
para velocidade de moderada a alta durante 1 minuto.
Alternativamente, se o agitador de placas não estiver disponível, homogeneíze com a pipeta 5
vezes para misturar.
e. Cubra a placa com uma tampa, depois incube por 60 minutos à temperatura ambiente.
1Incube as amostras com
Green Diluent
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a. Lave os poços da microplaca 6 vezes com 400 µl de Wash Buer‑1x, deixando os poços de molho
por 10 segundos em cada lavagem.
Nota: Preencha cuidadosamente os poços com Wash Buer‑1x para evitar contaminação cruzada
com os poços adjacentes.
b. Dê leves batidas com a placa sobre um papel toalha para remover todo o Wash Buer‑1x dos
poços.
2Lavagem dos poços
IMPORTANTE! Prepare o Conjugate-1x por no máximo 15 minutos antes do uso.
a. Para cada tira da microplaca de 8 poços, combine 10 µl de Conjugate-100x Concentrate com 1 ml
de Green Diluent.
b. Misture o Conjugate-1x completamente. Evite a formação de espuma, pois pode provocar
desnaturação do Conjugate.
c. Devolva a porção não usada de Conjugate-100x Concentrate ao armazenamento entre 2 °C e 8 °C.
3Dilua o Conjugate100x
Concentrate
a. Acrescente 100 µl de Conjugate-1x em cada poço da microplaca.
b. Misture completamente usando um agitador de placas congurado para velocidade moderada a
alta durante 1 minuto.
Alternativamente, se o agitador de placas não estiver disponível, homogeneíze com a pipeta 5
vezes para misturar.
c. Cubra a placa com uma tampa, depois incube por 60 minutos à temperatura ambiente.
d. Aspire a solução dos poços, depois lave os poços 6 vezes com Wash Buer‑1x (consulte “Lavagem
dos poços“ na página 7).
4Acrescentar o
Conjugate1x
IMPORTANTE!
·Prepare a solução do substrato enzimático imediatamente antes do uso.
·Utilize recipientes de plástico polipropileno estéreis. Não use recipientes ou pipetas de poliestireno.
a. Para cada tira da microplaca de 8 poços, combine 10 µl de Chromogen Solution-100x Concentrate
com 1 ml de Enzyme Substrate Buer.
Exemplo: Para seis tiras da microplaca, combine 60 µl de Chromogen Solution-100x Concentrate
com 6 ml de Enzyme Substrate Buer.
b. Misture completamente a solução do substrato enzimático.
Nota: Se surgir uma coloração azul, descarte a solução.
5Prepare a solução do
substrato enzimático
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7
Nota: Comece o tempo de incubação de 30 minutos quando a solução do substrato enzimático for
acrescentada ao primeiro poço.
a. Acrescente 100 µl da solução de substrato enzimático em cada poço da microplaca.
b. Misture completamente usando um agitador de placas congurado para velocidade moderada a
alta durante 1 minuto.
Alternativamente, se o agitador de placas não estiver disponível, homogeneíze com a pipeta 5
vezes para misturar.
c. Cubra a placa com uma tampa, depois incube por 30 minutos em temperatura ambiente no
escuro.
6Acrescente e a solução do
substrato enzimático
a. Acrescente 50 µl de Enzyme Stopping Solution a cada poço na mesma ordem em que a solução
de substrato enzimático foi dispensada.
b. Dê leves batidas na lateral da placa para misturar delicadamente.
A solução nos poços muda de azul para amarelo.
c. Leia a placa a 450 nm (ltro de referência entre 620-650 nm) dentro de 5 minutos.
7Acrescentar a Enzyme
Stopping Solution, depois
leia a placa
Analise os resultados
Calcule a absorbância média
1. Calcule o valor médio de OD450 de todas as amostras e os controles.
2. Se IFN-γ for detectado nas amostras estimuladas por Nil Antigen Control, subtraia o valor médio de OD450 dos resultados para
aquele animal.
Nota: A detecção do IFN-γ nas amostras estimuladas por Nil Antigen Control pode indicar coinfecção ou outro distúrbio.
Critérios de validação
Se os seguintes critérios não forem atendidos, os resultados devem ser invalidados e as amostras devem ser testadas novamente.
Tipo de reação OD450 média Coeficiente de variação (%)
Negative Primate IFN-γ Control < 0,150 30
Positive Primate IFN-γ Control > 1,00 15
Interpretação dos resultados
Interprete os resultados de acordo com a tabela a seguir:
OD450 média Interpretação
Bovine PPD − Avian PPD > 0,050 e
Bovine PPD − Nil Antigen Control > 0,050 Positivo
Avian PPD > Bovine PPD e
Avian PPD > Nil Antigen Control Negativo[1]
[1] O animal é considerado um reator a PPD aviária.
Para leituras de absorbância que estão fora do limite do leitor de microplacas, consulte “Teste novamente as amostras com resultados
inválidos“ na página 9.
Este teste pode fornecer um resultado falso positivo ou falso negativo devido às condições locais. Interprete os resultados no contexto
de todas as informações clínicas, históricas e epidemiológicas disponíveis e relevantes ao animal em teste. Em circunstâncias
especícas, outros testes conrmatórios podem ser necessários.
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A interpretação do teste e as consequentes decisões de criação de animais são de responsabilidade do usuário, de um consultor
veterinário, consultor de saúde animal ou autoridade.
Teste novamente as amostras com resultados inválidos
1. Dilua as amostras de plasma 1:4 em Green Diluent.
Por exemplo, acrescente 25 µl do plasma de teste a 75 µl de Green Diluent.
2. Agite no vórtex em velocidade de moderada a alta por 3 a 5 vezes, depois repita o procedimento de ELISA.
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Perguntas frequentes sobre o produto
Software, correções e atualizações
Treinamento para várias aplicações e instrumentos
Pedido e suporte on-line
Documentação do produto
Guias do usuário, manuais e protocolos
Certicados de análise
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Nota: Para obter a FISPQ de reagentes e produtos químicos de outros fabricantes, entre em contato com o fabricante.
Garantia limitada do produto
Life Technologies Corporation e/ou sua(s) aliada(s) garantem seus produtos conforme estabelecido nos Termos e Condições Gerais de
Venda que se encontram em www.thermosher.com/us/en/home/global/terms-and-conditions.html. Em caso de dúvidas, entre em
contato com a Life Technologies em www.thermosher.com/support.
Prionics Lelystad B.V. | Platinastraat 33 | 8211 AR Lelystad | The Netherlands
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As informações deste guia estão sujeitas a alteração sem aviso.
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Traduzido da Publicação em Inglês Número MAN0018635 Rev. A.0.
Histórico de revisão: N.º da pub. MAN0018635
Revisão Data Descrição
A.0 25 de novembro de 2019
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atualizações necessárias referentes ao número de publicação, às informações sobre licença limitada, à garantia, às
marcas registradas e aos logotipos.
Os procedimentos para preparo do antígeno e estimulação de sangue foram atualizados.
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